1.材料：环烯烃聚合物 (COP) 和环烯烃共聚物 (COC) 是所有产品的优选材料。这些医用级塑料是器官芯片和生命科学应用的好材料。
2.抗渗透性：这些材料对氧气和水蒸气的渗透性非常低，可以通过控制培养基中的浓度和通量来精确控制微通道内的这些气体。事实上，通过仔细控制这些参数，可以在我们的芯片内进行缺氧实验。
3.无非特异性吸附问题：其他常用于生产器官芯片 OoC 的化学材料（如 PDMS）存在非特异性吸收问题，因此无法用于药物测试实验。COP 和 COC 是疏脂性材料，不存在此问题，因此可用于药物开发和扩散实验。
4.光学特性：COP 和 COC 具有出色的光学性能。这些材料在可见光和近紫外范围内具有透明度，双折射低，阿贝数（Abbe number）高，是显微镜应用的理想选择。
5.良好的耐化学性和耐热性：COP 和 COC 对酸和极性溶剂具有出色的耐化学性。此外，这些化合物具有较高的玻璃化转变温度，在某些配方中接近 190°C。
6.大规模生产：Beonchip 的产品采用热塑性注塑工艺制造，确保了批次之间的可重复性，并允许大批量生产而不影响其质量。
7.微流体兼容性：Beonchip 的微流体连接设计用于各类型的微流体控制系统，如注射泵、蠕动泵或基于压力的流量控制系统。我们可以为我们的芯片提供适配器，这些适配器与您的流量控制系统的鲁尔或倒钩连接兼容。
Beonchip目前有标准芯片和定制化芯片，其中有四种类型：
Be-Flow专门用于培养基流动下的细胞培养。它允许在两个独立的通道中进行长期的2D或3D培养。Be-Flow兼容各种微流控泵系统，并且由于其入口/出口处的流体储存器，也可以简单地与摇床一起使用，请移至“资料下载”获取原版的Be-Flow使用说明书及应用说明。
应用： 血管研究、与细胞粘附到血管内皮有关的过程(感染、细胞治疗、转移等)。
举例：
1.Ayuso, J. M. et al. SU-8 Based Microdevices to Study Self-Induced Chemotaxis in 3D Microenvironments. Front. Mater. 2, 1–10 (2015).
该文章研究SU-8作为复杂细胞培养微装置结构材料的可行性，展示了一种基于SU-8的微装置Be-Flow，通过营养限制与细胞自然代谢相结合，细胞表现出向营养源迁移的自然反应，展示了细胞如何适应其微环境的变化。
Be-Transflow通过多孔膜将培养井与微流控通道连接起来，允许研究复杂的培养配置。非常适合空气液界面（ALI）培养、内皮/上皮屏障和交互研究。请移至“资料下载”获取原版的Be-Transflow使用说明书及应用说明。
应用： 免疫系统体外模型、血管粥样硬化斑块形成、上皮粘连等。
举例：
1.Olaizola-Rodrigo et al., S. Reducing Inert Materials for Optimal Cell–Cell and Cell–Matrix Interactions within Microphysiological Systems. Biomimetics, 9, 262. (2024)
该研究使用Be-Transflow研究减少惰性材料以优化微生理系统中的细胞-细胞和细胞-基质相互作用，涉及微生理系统和细胞相互作用领域。
2.Fernandez-Carro, E. et al. Human Dermal Decellularized ECM Hydrogels as Scaffolds for 3D In Vitro Skin Aging Models. Int. J. Mol. Sci. , 25, 4020 (2024)
该研究使用Be-Transflow研究人类皮肤脱细胞ECM水凝胶作为3D体外皮肤老化模型支架，属于组织工程和皮肤老化模型领域。
Be-Doubleflow由两个通过多孔膜连接的可灌流通道组成。在仿生环境中探索不同2D和3D培养之间的相互作用，并通过选择适合您应用的孔径来控制相互作用的效率。请移至“资料下载”获取原版的Be-Doubleflow使用说明书及应用说明。
应用： 当需要气体控制（缺氧、厌氧、缺血-再灌注）、研究循环粒子（细菌、免疫系统、循环肿瘤细胞）的影响以及内皮/上皮屏障，特别是当通量在共培养的两侧都发挥作用时，可使用该芯片进行您的研究。
举例：
1.Stankovic, T. et al. In vitro biomimetic models for glioblastoma-a promising tool for drug response studies. DRUG RESISTANCE UPDATES. 55, pp. 100753. (2021).
该研究使用综述Be-Doubleflow体外仿生模型用于胶质母细胞瘤药物响应研究，属于癌症研究和药物筛选领域。
Be-Gradient Barrier Free为3D细胞培养应用电化学梯度而设计的设备。BE-Gradient兼容各类型的光学显微镜（倒置相差显微镜、共聚焦显微镜、荧光显微镜等）。Be-Gradient由一个细胞培养室和两个与其直接接触的通道组成。改变中央室两侧通道之间一种元素的浓度会产生化学梯度。请移至“资料下载”获取原版的Be-Gradient Barrier Free使用说明书及应用说明。
应用： 细胞/球体的侵袭和迁移、血管生成、转移、血管生成、趋化、缺血、细胞分化或氧化应激。
举例：
1.Clara Bayona et al, Development of an organ-on-chip model for the detection of volatile organic compounds as potential biomarkers of tumour progression, Biofabrication 16, 045002 (2024)
该研究使用Be-Gradient Barrier Free开发了一个“器官芯片”模型，用于检测挥发性有机化合物作为肿瘤进展的潜在生物标志物，属于癌症研究、器官芯片技术和生物标志物检测领域。
2.Olaizola-Rodrigo et al., Tuneable hydrogel patterns in pillarless microfluidic devices, Lab Chip,24, 2094-2106 (2024).
该研究使用Be-Gradient Barrier Free研究可调节水凝胶图案的无柱微流控设备，涉及微流控技术和水凝胶应用领域。
从微通道尺寸、底座厚度、微孔尺寸、底座类型等多个角度定制适合您研究的芯片。
上海曼博生物医药科技有限公司是Beonchip正式授权的中国代理商，您可直接联系我们或经我们授权的经销商进行咨询、定制、选购。
1. Clara Bayona et al, Development of an organ-on-chip model for the detection of volatile organic compounds as potential biomarkers of tumour progression, Biofabrication 16, 045002 (2024)
2. Olaizola-Rodrigo et al., S. Reducing Inert Materials for Optimal Cell–Cell and Cell–Matrix Interactions within Microphysiological Systems. Biomimetics, 9, 262. (2024)
3. Olaizola-Rodrigo et al., Tuneable hydrogel patterns in pillarless microfluidic devices, Lab Chip,24, 2094-2106 (2024).
4. Fernandez-Carro, E. et al. Human Dermal Decellularized ECM Hydrogels as Scaffolds for 3D In Vitro Skin Aging Models. Int. J. Mol. Sci. , 25, 4020(2024)
5. Fernandez-Carro, E. et al. ‘Nanoparticles Stokes radius assessment through permeability coefficient determination within a new stratified epithelium on-chip model’, Artificial cells, nanomedicine, and biotechnology, 51(1), pp. 466–475. (2023).
6. González-Lana, S. Surface modifications of COP-based microfluidic devices for improved immobilisation of hydrogel proteins: long-term 3D culture with contractile cell types and ischaemia model. LAB ON A CHIP. (2023).
7. Ayensa-Jiménez, J. et al. M. Analysis of the parametric correlation in mathematical modeling of in vitro glioblastoma evolution using copulas.MATHEMATICS. 9 – 1, pp. 27 (2021).
8. Pérez-Aliacar. M. et al. Predicting cell behaviour parameters from glioblastoma on a chip images. A deep learning pproach. Computers in Biology and Medicine. 135, pp. 104547 (2021).
9. Stankovic, T. et al. In vitro biomimetic models for glioblastoma-a promising tool for drug response studies. DRUG RESISTANCE UPDATES. 55, pp. 100753. (2021).
10. Ayensa-Jiménez, J. et al. Mathematical formulation and parametric analysis of in vitro cell models in microfluidic devices: application to different stages of glioblastoma evolution. SCIENTIFIC REPORTS. 10 – 1, pp. 21193 (2020).
11. Virumbrales-Muñoz M et al. Enabling cell recovery from 3D cell culture microfluidic devices for tumour microenvironment biomarker profiling. SciRep. (2019).
12. Ayuso, J. M. et al. Glioblastoma on a microfluidic chip: Generating pseudopalisades and enhancing aggressiveness through blood vessel obstruction events. Neuro. Oncol. 19, now230 (2017).
13. De Miguel, D. et al. TRAIL-coated lipid-nanoparticles overcome resistance to soluble recombinant TRAIL in non-small cell lung cancer cells. Nanotechnology 27, 185101 (2016).
14. De Miguel, D. et al. Improved Anti-Tumor Activity of Novel Highly Bioactive Liposome-Bound TRAIL in Breast Cancer Cells. Recent Pat.Anticancer. Drug Discov. 11, 197–214 (2016).
15. De Miguel, D. et al. High-order TRAIL oligomer formation in TRAIL_x0002_coated lipid nanoparticles enhances DR5 cross-linking and increases antitumour effect against colon cancer. Cancer Lett. 383, 250–260(2016).
16. Ayuso, J. M. et al. Development and characterization of a microfluidic model of the tumour microenvironment. Sci. Rep. 6, 36086 (2016).
17. Martínez-gonzález, A. et al. Systems Biology of Tumor Microenvironment. vol. 936 (Springer International Publishing, 2016).
18. Ayuso, J. M. et al. SU-8 Based Microdevices to Study Self-Induced Chemotaxis in 3D Microenvironments. Front. Mater. 2, 1–10 (2015).
是的。
所有 芯片在生产后都会进行灭菌处理，并以独立包装形式提供。
厂家保证芯片在发货后 6 个月内保持无菌和亲水性。
芯片主要采用 COP（环烯烃聚合物）制造。
COP 本身具有较低的自发荧光，因此适合用于荧光实验和荧光成像， 的标准设备均可用于荧光成像应用。
需要注意的是，Be-Gradient Barrier-Free 产品由于制造过程中采用了特殊表面处理，可能存在轻微自发荧光，但仍然可以用于荧光实验和成像。
COP 是一种惰性材料，本身具有疏脂性（lipophobic），相比 PDMS 等硅基材料，不容易发生明显的非特异性吸附。
因此，COP 特别适合用于药效评价和毒性研究，能够减少材料与培养基及实验化合物之间的非特异性相互作用。
Beonchip提供多种连接器套件，可以根据流体控制方式和管路类型进行选择。
目前主要包括：
因此，选择连接器时需要结合你的微流控系统和所使用的 tubing 类型。
不需要。
如果使用 Rocker 产生流体运动和剪切力，可以直接使用芯片，不需要额外连接流体管路。
但是实验过程中需要使用芯片盖（chip lids），以降低污染风险。
厂家也建议在细胞培养早期阶段，可以先使用 Rocker，待细胞状态稳定后，再连接最终的微流控控制系统。
细胞可以通过培养基获得氧气。
COP 对氧气具有较低的渗透性，这反而是 Organ-on-Chip 实验中的一个优势，因为研究人员可以通过控制培养基中的氧浓度以及培养基流量，更准确地控制芯片内部的氧环境。
因此，Beonchip芯片也可以用于建立和研究低氧（Hypoxia）条件。
Beonchip使用 COP 和 COC作为主要材料，这些材料具有：
低气体渗透性还能够帮助研究人员更准确地控制微通道内部的气体环境。
可以。
Beonchip芯片使用 COP/COC 和 PET 等材料制造，异丙醇通常可以安全使用，并可用于实验室中的清洁或灭菌操作。
乙醇在典型实验室条件下也具有良好的材料兼容性。
不建议使用丙酮。
丙酮属于较强的有机溶剂，可能导致 COP/COC：
因此，如果需要清洁或灭菌，建议优先使用异丙醇或乙醇。
如果实验必须接触其他溶剂，建议提前咨询 进行材料兼容性评估。
可以。
实验结束后，可以通过细胞消化的方法回收芯片中的细胞，用于后续分析。
基本流程包括：
Beonchip官方也提供了详细的细胞提取技术资料。欢迎联系我们获取。
可以。
回收细胞后，可以根据实验目的进行相应的下游分析。
具体可以根据实验体系进一步开展基因表达、蛋白分析等研究。
需要注意的是，官方 FAQ 主要确认了细胞回收可行性，并没有在该 FAQ 页面限定具体的下游分析方法。
可以。
支持对标准芯片进行定制，例如：
例如 Be-Transflow 和 Be-Doubleflow 的膜孔径可以根据需求进行调整。
可以。
使用客户自有膜材进行芯片集成是Beonchip提供的一项定制服务。
具体成本会根据膜材的操作难度以及集成到芯片制造流程中的复杂程度确定。后续可以按照定制产品进行报价。
可以。
除了对现有产品进行参数修改外， 也可以根据客户需求开发全新的微流控产品。
如果客户已经有 Organ-on-Chip、微流控或生物医学/制药应用方面的设计想法，可以与厂家沟通，从原型设计逐步推进到产品量产。
可以。
通过相应的连接器，可以将多个芯片串联连接。
这种方式特别适用于研究不同组织之间的相互作用和串扰（crosstalk），例如构建多器官系统。
不是必须。
如果芯片处于 CO₂ 培养箱中，并且没有持续灌流，培养箱中的 CO₂ 环境可以帮助维持培养基的正常 pH，因此不一定需要额外添加 HEPES。
但是，如果进行连续灌流培养（continuous perfusion），厂家强烈建议使用 HEPES 缓冲体系。
连续灌流时，培养基通常会储存在：
这些环境可能限制培养基与培养箱 CO₂ 气氛之间的充分气体交换，从而造成 pH 波动。
HEPES 可以作为额外的缓冲体系，帮助维持更加稳定的 pH 环境，从而有助于：
不可以。
Beonchip的细胞培养芯片均为一次性使用产品。
这是因为细胞培养、ECM 包被和培养基等都会在微流控通道内部留下残留物，即使进行清洗和细胞解离，也无法保证下一次使用时仍然具有与新芯片相同的洁净和实验条件。
因此，为了保证实验的一致性和重复性，官方建议每个实验使用新的芯片。
可以。
与芯片不同，大多数流体连接器和 tubing 可以经过适当灭菌后重复使用。
例如官方建议：
但部分附件，例如芯片盖、Be-Transflow Well Seals 等，并不建议进行高压灭菌。
MineBio 精选 
BioLamina人类重组层粘连蛋白 
在线咨询
