在AAV病毒包装的三质粒系统中,质粒比例的优化对病毒滴度、空壳率和包装效率十分重要。那么在三质粒包装系统中,怎么样才能得到正确的三质粒比例,达到理想的病毒包装效果呢?很多老师可能都曾被这个问题困扰过,小编现在就分享一些在病毒包装过程中会用到的一些小技巧。
首先,AAV的包装依赖于以下三种核心质粒的协同作用:
携带目标基因(两侧为ITR序列)及调控元件,决定病毒基因组内容
提供腺病毒辅助基因(E2A、E4、VA RNA),支持病毒复制与包装
编码AAV复制蛋白(Rep)和衣壳蛋白(Cap),决定血清型和组织靶向性(如AAV2、AAV9)
二、三质粒比例对病毒包装的影响
• 经典比例:1:1:1(等摩尔比),但需根据实验体系调整(方式见下文)
• 优化调整:部分血清型或大片段基因需提高载体质粒比例(如2:1:1),以平衡Cap蛋白与基因组供给
• 比例梯度:以1:1:1为基础,设置载体质粒梯度(如1.5:1:1、2:1:1)和Rep/Cap梯度(如1:1.5:1)
• 固定参数:总质粒量恒定(如2 μg/孔于6孔板),转染试剂(PEI)与DNA质量比2:1
• 病毒滴度:通过qPCR、ddPCR(基因组滴度)或其他方式进行转染滴度量化
• 空壳率:透射电镜(TEM)或ELISA检测完整病毒颗粒比例
• 细胞毒性:转染后48-72小时观察细胞形态,CCK-8法测定存活率
AAV包装容量为4.7kb,若目的基因(如大片段基因)接近此阈值,需减少非必需元件(如长polyA尾)以腾出空间。此时需增加辅助质粒(Rep/Cap质粒) 比例,确保衣壳蛋白充足支持包装。
示例:包装4.2kb基因时,建议Rep/Cap:载体质粒=2:1;若基因增至4.5kb,可调整为2.5:1。
用荧光报告基因(如GFP)替代目标基因,快速评估转染效率(>70%为合格)
在6孔板中测试3-5种比例,收集上清检测滴度(目标>1×10⁶ vg/mL)
选择合适比例扩大至T75或摇瓶培养,验证重复性
• SDS-PAGE:检测衣壳蛋白完整性(VP1/VP2/VP3比例)
• qPCR/ddPCR:确认基因组包装效率,排除ITR序列损伤
• 质粒质量:质粒纯度要足够高(OD260/280≈1.8-2.0),避免内毒素污染(<0.1 EU/μg)
• 转染试剂推荐:PEI MAX/GMP级MAXgene
• 血清型推荐(部分):
(1)神经系统:推荐AAV9、PHP.B
(2)肝脏靶向:推荐AAV8
(3)肺部递送:推荐AAV5或AAV6
• 转染试剂配比:PEI与质粒质量比建议为 2:1,孵育时间控制在10-20分钟
• 细胞状态:使用对数生长期、低代次(≤30代)的293细胞,贴壁系统待汇合度约85%时转染效果更佳
• 收获时间:AAV通常在转染后72小时收毒,此时病毒滴度达到峰值
通过系统性梯度实验、血清型特异性调整和严格的质控,可筛选出合适的三质粒系统比例,有助于提升AAV包装效率,降低空壳率与细胞毒性,从而为基因治疗研究提供高滴度、高完整性的病毒载体。
如有更多需求,欢迎随时联系曼博生物。