PEI MAX转染试剂 MW40000(PEI 40K)

PEI MAX - Transfection Grade Linear Polyethylenimine Hydrochloride (MW 40,000)

产品简介

PEI MAX——高产商业化转染试剂-高度浓缩，可制备更多量转染试剂

Polysciences转染试剂系列是基于聚乙烯亚胺（Polyethylenimine，PEI）的产品，因其较高的转染效果，已应用于工业化生产。聚乙烯亚胺是一种具有较高的阳离子电荷密度的有机大分子，每相隔二个碳原子，即每“第三个原子都是质子化的氨基氮原子，使得聚合物网络在任何pH下都能充当有效的“质子海绵”(proton sponge)体。PEI可用作转染试剂，它可以缩聚DNA分子形成颗粒并转染真核细胞。

PEI MAX 40K是线性聚乙烯亚胺盐酸盐形式（Linear Polyethylenimine Hydrochloride），是线性化聚乙烯亚胺PEI 25K的升级产品。相比于PEI 25K，PEI MAX 40K ：

1.完全水解（去乙酰化）；

2.盐酸盐形式，具更高的水溶特性；

3.含更长连续性乙烯亚胺片段，其质子化氮水平比PEI 25K提高11%以上。

PEI MAX（分子量 40,000 线性聚乙烯亚胺）是一款功能全面、广受信赖且经济高效的广谱转染试剂，专为从早期发现到工艺开发的全流程研发设计，被公认为体外和体内应用的金标准转染试剂。

PEI MAX 凭借与 DNA 形成稳定复合物、高效进入细胞并实现优异内涵体逃逸的核心特性，在包括 HEK293 和 CHO 细胞在内的多种细胞系中均能达到高转染效率，同时完美适配贴壁和悬浮两种培养模式。

该试剂可在不影响细胞活力的前提下实现高表达滴度，相比市场上其他 PEI 类及脂质体转染试剂具有显著综合优势。

产品主要特点

•广谱转染能力：可高效转染绝大多数细胞类型，完美适配生物制药生产中的各类应用场景。

•性能优异：实现高转染效率的同时保持极低细胞毒性，确保各类实验获得最佳结果。

•流程灵活：操作简单易优化，可无缝融入现有实验方案；支持从孔板、培养瓶到大容量生物反应器的全规模放大。

•经济实惠：定价亲民，相比同类进口转染试剂可大幅节省实验与生产成本。

•久经验证：依托 Polysciences 60 余年特种化学品制造技术积淀，十余年来深受全球科研工作者信赖，为稳定可靠的研发与生产工作保驾护航。

应用领域

•  瞬时转染与稳定转染 ：

瞬时转染可实现目的蛋白的快速表达（24-72 小时），适合早期靶点验证和高通量筛选，稳定转染可构建长期表达目的基因的细胞株，用于规模化生产

•  腺相关病毒（AAV）与慢病毒载体生产 ：

病毒载体生产是基因治疗和细胞治疗领域的核心环节，PEI MAX是目前工业界 AAV 和慢病毒包装的常用转染试剂

•  重组蛋白与单克隆抗体（mAb）生产：

重组蛋白和单抗生产是生物制药的核心工艺，PEI MAX可在悬浮 HEK293 和 CHO 细胞中实现高达克级以上的表达量（与工艺密切相关）

客户体验

Expression of mAb B72-3, 8 days post-transfection using Gibco Freestyle F17 cell culture media . For more information, see the following publication: Delafosse, L., Xu, P. & Durocher, Y. Comparative study of  polyethylenimines for transient gene expression in mammalian HEK293 and CHO cells. Journal of Biotechnology 227,103–111 (2016). 

为什么全球数万篇文献都选择Kyfora by Polysciences的PEI转染试剂？

一、客观数据：PEI转染试剂的普遍应用

Polysciences旗下Kyfora Bio的PEI转染试剂（如PEI MAX）在科研界拥有庞大的用户基础。据不完全统计，全球已有数万家实验室和众多生物技术公司选择使用这款PEI，相关应用案例可见于数万篇科研文献中。从基础研究到技术转化，从基因编辑到病毒载体包装，PEI的应用场景十分多元。

二、解析PEI转染试剂的科研优势

• 性能稳定：针对HEK293、CHO等常用细胞系，PEI转染试剂通常能提供较为稳定的转染效率，并保持较低的细胞毒性，有助于实验数据的重复性。

• 经济实用：相比部分高端脂质体试剂，PEI在成本和性能之间取得了较好的平衡，适合实验室进行规模化应用。

• 适用性广：无论是CRISPR基因编辑还是AAV病毒生产，PEI都能满足多样化的实验需求，简化实验流程。

三、选择Kyfora by Polysciences PEI的科研考量

当实验方案中采用PEI转染试剂时，这种成熟的技术路径通常更容易被同行理解和接受。Kyfora by Polysciences的PEI作为一种科研工具，其价值体现在：

• 助力成果发表：使用经过丰富文献验证的方法，有助于减少审稿人对实验技术路线的疑虑。

• 提升实验效率：稳定的性能可以减少实验条件的反复摸索，让科研人员更专注于科学问题的研究。

• 优化资源配置：在保证实验效果的前提下，有助于实验室更合理地规划科研经费。

四、Polysciences权威渠道与曼博生物的无忧售后

在生物医学和生物技术领域，选择可靠的供应商与选择可靠的试剂同等重要。Polysciences及其旗下品牌Kyfora Bio在中国区的官方独家授权提供商——上海曼博生物医药有限公司，正是连接全球前沿技术与国内科研用户的重要桥梁。

选择Polysciences PEI，就是选择“一站式”服务保障

作为Polysciences在中国市场的长期战略合作伙伴，上海曼博生物建立了完善的售前、售中、售后服务体系以及重组的国内库存。其技术团队具备丰富的产品应用经验，能够针对不同细胞系（如HEK293、CHO等）的转染难题，提供专业的技术支持与优化方案，协助客户解决实验过程中遇到的实际问题。

近期部分PEI MAX引用文献：

1. Liao, R., Ka Wing Chan, C., ..., Wong, & N. (2026). Chimeric antigen receptor T cell targeting CD44E variant in HCC holds therapeutic potential. *Molecular Therapy Oncology*. https://doi.org/10.1016/j.omton.2026.201181

2. Gradinaru, V., Ravindra Kumar, S., Deverman, & B. (2026). Virus compositions with enhanced specificity in the brain. *Unknown Journal*. 

3. Ren, H., Nie, J., ..., Bai, & Z. (2026). Enhanced AAV production via rational design of a novel pHelper vector integrated with HSV-1 helper genes. *Synthetic and Systems Biotechnology*. https://doi.org/10.1016/j.synbio.2025.12.018

4. Zhang, M., Hu, Y., ..., Shi, & Y. (2026). Chemically synthesized high-fidelity oligos ≤ 600 nt as building blocks to accelerate complex gene construction in synthetic biology.. *Synthetic biology (Oxford, England)*. 

5. Kolarova, K., Stiborova, H., ..., Stehlik, & S. (2026). Steam-sterilizable cationic nanodiamond–silver composites with enhanced antibacterial activity. *Nanoscale Advances*. https://doi.org/10.1039/d6na00095a

6. Spokaite, S., Ohashi, Y., ..., H Andreotti, & A. (2026). A novel RAB5 binding site in human VPS34-CII that is likely the primordial site in eukaryotic evolution. *eLife*. https://doi.org/10.7554/eLife.110040

7. Blake, L., Daniel, S., ..., Feng, & Z. (2026). In vitro–reconstituted Drosophila Arc capsids deliver gene editors to dystrophic muscle. *bioRxiv*. https://doi.org/10.64898/2026.05.25.727180

8. Takuya, K., Cole J., W., ..., Yuta, & N. (2026). An engineered streptavidin condensate platform for chemically inducible control of endogenous proteins in mammalian cells. *bioRxiv*. https://doi.org/10.64898/2026.05.22.725644

9. Kobata, K., Furuta, K., ..., Kaito, & C. (2026). Staphylococcus aureus activates dendrite elongation in dendritic cells.. *Biochemical and biophysical research communications*. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2026.154001

10. Satoshi, T., Guoye, G., ..., Wendell A., & L. (2026). Coupling Mechanical Regulation with Biochemical Reaction-Diffusion Circuits Yields Robust Self-Organized Pattern Formation. *bioRxiv*. https://doi.org/10.64898/2026.05.23.727407

11. Justin B., S., Xia, L., ..., Jonathan A., & J. (2026). Transmembrane Domain Dominance Drives Emergent Signaling and Allosteric Inversion in mGlu 1/5 Heterodimers. *bioRxiv*. https://doi.org/10.64898/2026.05.20.726619

12. Hasegawa, K., Hama, N., ..., Kuwako, & K. (2026). Age-related decline in nuclear envelope LINC complex drives neuronal aging via axon initial segment dysfunction.. *EMBO reports*. https://doi.org/10.1038/s44319-026-00786-5

PEI MAX粉末配置方法：

1) 将1g PEI MAX 40K放入盛有900 mL水的玻璃烧杯中；

2) 放入搅拌转子，放置于磁力搅拌器上，设置搅拌程序以形成一个较小的漩涡；

3) 等待PEI MAX 40K完全溶解，通常需要5分钟左右；

4) 用25 mL塑料移液管加入1 N氢氧化钠滴定至pH 6.9~7.1；

5) 如果不小心超过7.1，则使用1N的盐酸和新的塑料移液管将pH重新滴定至6.9~7.1；

6) 将溶液转移到1L玻璃量筒中，加入水定容至1L；

7) 用无菌真空过滤膜过滤配制的转染试剂溶液；

8) 按需分装，4°C储存（切记不可冷冻）；

注：未经配制的粉末有效期为2年。

配置成液体后分装在合适的瓶子中，并且保存在4℃的转染试剂将可在6个月之内保持性能。

如仅用于蛋白定性研究，分装的转染试剂可延长有效使用期至1年。

经过驯化的无血清培养悬浮细胞转染流程

1.准备工作

 转染前 2~3 小时，种植细胞密度为 1X106 /mL 于培养容器中。

2. 转染步骤（以 250mL 摇瓶为例，转染前种植细胞总体积为 25mL，最终总培养体积为 50mL）

准备 PEI-DNA 转染混合物（以下操作顺序十分重要）。

1) 在含有2.5mL（25mL的10%）稀释液的聚丙烯EP管中加入 50ug 质粒 DNA（质粒用量建议在 1~2ug/106 细胞之间优化，此处使用 2ug/106 细胞）；

2) 轻轻地混匀/振荡溶液；

3) 在 DNA 溶液中加入 50~200uL PEI 转染试剂（PEI/DNA 的比例建议在 1~4：1之间优化，首次推荐使用 2：1 或 3：1）；

4) 涡旋振荡 5 秒钟；

5) 将管子静置于超净工作台 10~15 分钟，使 PEI-DNA 复合物形成（共孵育时间建议不超过 20 分钟）；

6) 用移液器轻轻上下吹打混合液 3 次。

注：边晃动摇瓶，边将 PEI-DNA 混合液加入更换了培养基的转染孔中，确保 PEI-DNA 复合物均匀分布，防止局部浓度过高。

3. 孵育培养

将细胞培养瓶放入培养箱，摇瓶培养 2~3 小时后，加入25mL新鲜培养基，继续培养。

通常，在转染后36-48小时可检测到重组蛋白表达或包装的病毒颗粒。转染后72-96小时可观察到最大产量。

含血清培养的贴壁细胞转染流程

1. 准备工作

• 转染前18~24小时细胞铺板。

• 在培养基中加入合适数量的细胞，以确保在转染前形成 60~80%汇合度的单细胞层，此为最理想的细胞转染密度。

2. 转染步骤（以 6 孔板单孔举例）

• 转染前 1~2 小时，将需要转染的孔中的培养基替换成 3mL 新鲜的含有2%低血清或无血清的培养基。（高浓度血清抑制PEI的性能，大多数情况下，较低的血清含量(≤ 5%)或无血清将获得较高的转染效率）。

• 准备 PEI-DNA 转染混合物（以下操作顺序十分重要）。

1) 在含有300uL（3mL的10%）稀释液的聚丙烯 EP 管中加入2ug质粒 DNA；

2) 轻轻地混匀/振荡溶液；

3) 在 DNA 溶液中加入 2~8 uL PEI 转染试剂（PEI-DNA 的比例建议在 1~4：1 之间优化，首次推荐使用 2：1 或 3：1）；

4) 涡旋振荡 5 秒钟；

5) 将管子静置于超净工作台 10~15 分钟，使 PEI-DNA 复合物形成（建议共孵育时间不超过 20 分钟）；

6) 用移液器轻轻上下吹打混合液 3 次。

注：边晃动细胞培养板，边将 PEI-DNA 混合液加入更换了培养基的转染孔中，确保 PEI-DNA 复合物均匀分布，防止局部浓度过高。

3. 孵育培养

  • 将细胞培养板放入培养箱培养 18~24（请注意，此处并非常规lipo脂质体转染的 4 小时后换液）小时后，更换含有血清的正常培养基；

  • 通常，在转染后 36-48 小时可检测到重组蛋白表达或包装的病毒颗粒，转染后 72-96 小时可观察到最大产量。