发布时间:2025/11/14 点击数:150 参考表格的细胞密度进行种板(注意:如果细胞维持在某种选择压力下,种板时需要去除用于筛选的抗生素,直至维持到第3天 )

总原则:对于第一次实验,建议使用2-30之间的MOIs进行病毒转导(如下实验步骤以MOI 10举例),并将LentiBOOST-P以1:100的标准浓度添加到总体积(培养基+病毒)。
在第二次实验中,建议在1:20-1:1000范围内滴定LentiBOOST-P用量,以确定最小活性浓度。(各组分用量仅供参考,实际最佳转导条件以实验室优化结果为准)
4°C复苏慢病毒
在细胞中直接加入计算好的LentiBOOST-P体积量,轻轻混匀
按下表计算所需慢病毒颗粒用量,并加入细胞培养基中,轻轻混匀
Spinoculate(可选):室温800g离心培养板90分钟(注意: Spinoculation步骤被发现可对大多数细胞增加转导效率。必须使用细胞培养板进行离心,以减少剪切力)
正常培养条件过夜培养细胞
移除含有病毒颗粒的培养基上清,更换成合适体积的正常培养基。
如果细胞汇合度较高,可在第四天稀释分板培养,后续按照常规流程进行培养基更换和细胞传代。
利用LV载体上的抗性筛选标记可筛选出稳定细胞系,事先需要进行杀伤曲线滴定合适的抗生素筛选浓度。(备注: 转导过程中请做好非转导阴性对照)
去除细胞中的培养基
加入含有一定浓度筛选抗生素的培养基
定期更换含有抗生素的培养基并持续培养细胞





