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LentiBOOST慢病毒转导增强剂使用方法protocol
发布时间:2025/11/14 点击数:150

使用Lentiboost慢病毒转导增强剂建议转导步骤

第1天: 种细胞

参考表格的细胞密度进行种板(注意:如果细胞维持在某种选择压力下,种板时需要去除用于筛选的抗生素,直至维持到第3天 )


使用lentiboost可参考表格的细胞密度进行种板



第2天: 病毒转导

总原则:对于第一次实验,建议使用2-30之间的MOIs进行病毒转导(如下实验步骤以MOI 10举例),并将LentiBOOST-P以1:100的标准浓度添加到总体积(培养基+病毒)。


在第二次实验中,建议在1:20-1:1000范围内滴定LentiBOOST-P用量,以确定最小活性浓度。(各组分用量仅供参考,实际最佳转导条件以实验室优化结果为准)

  1. 4°C复苏慢病毒

  2. 在细胞中直接加入计算好的LentiBOOST-P体积量,轻轻混匀

  3. 按下表计算所需慢病毒颗粒用量,并加入细胞培养基中,轻轻混匀

  4. Spinoculate(可选):室温800g离心培养板90分钟(注意: Spinoculation步骤被发现可对大多数细胞增加转导效率。必须使用细胞培养板进行离心,以减少剪切力)

  5. 正常培养条件过夜培养细胞


第3天: 更换培养基

移除含有病毒颗粒的培养基上清,更换成合适体积的正常培养基。


第4天 : 维持培养

如果细胞汇合度较高,可在第四天稀释分板培养,后续按照常规流程进行培养基更换和细胞传代。


第5天: 筛选稳定细胞系(可选)

利用LV载体上的抗性筛选标记可筛选出稳定细胞系,事先需要进行杀伤曲线滴定合适的抗生素筛选浓度。(备注: 转导过程中请做好非转导阴性对照)

  1. 去除细胞中的培养基

  2. 加入含有一定浓度筛选抗生素的培养基

  3. 定期更换含有抗生素的培养基并持续培养细胞