发布时间:2026/02/03 点击数:370 根据标准方案培养CD34⁺HSC。细胞在37°C的含5%二氧化碳的加湿培养箱中孵育。
计数CD34⁺HSC,并在24孔板中每孔接种1x10⁶个细胞。LentiBOOST增强剂和慢病毒直接添加到细胞中。
预实验建议:慢病毒转导的感染复数(MOI)可设置为2~30;LentiBOOST增强剂的初始工作浓度建议为1mg/mL,按体系总体积(培养基+病毒液)的1:100比例添加。
后续优化实验建议:需将LentiBOOST增强剂的浓度梯度设置为0.1~5mg/mL(对应体积比1:1000~1:20),以此筛选出该试剂的最低有效浓度。
此外,可根据需求选择离心辅助转导:室温条件下,600×g离心90分钟即可。
移除含有病毒颗粒的培养基上清,更换成合适体积的正常培养基维持培养。
根据标准方案刺激原代T细胞。此步骤应根据个人协议进行调整。
在+4°C下解冻慢病毒。
配制500μl细胞培养液,按体系总体积1:100的比例加入LentiBOOST增强剂,使其初始工作浓度达到1mg/mL。
后续可测试LentiBOOST增强剂的浓度范围,建议设置为0.1~5mg/mL。
按实验所需感染复数(MOI)向培养液中加入病毒载体,轻柔混匀。
预实验阶段,推荐将MOI值设置在2~30区间。
离心收集1×10⁶个细胞(细胞数量可根据实验需求调整)。
将细胞沉淀重悬于上述含LentiBOOST与病毒载体的培养液中,充分混匀。
将细胞悬液接种至24孔细胞培养板中。
离心转导(可选步骤):将细胞培养板置于室温条件下,以800×g离心力离心90分钟。
将培养板放入培养箱,于37℃、5%CO₂条件下过夜培养。
按标准实验方案更换培养基,并维持培养。





